南京医科大学/北京安贞医院《ACS Nano》可注射导电纳米胶束水凝胶(载 α- 生育酚)助力心肌梗死修复
具备 可注射性 (30-35℃温敏固化)、 高拉伸性 (>140%)、 良好导电性 (随 PEDOT:PSS 浓度提升而增强)、组织黏附性(黏附强度较无 PDA 组提升约 5 倍)及抗氧化性。兔心肌梗死(MI)模型中,术后 4 周 FPDA 组 左心室射血分数(LVEF)和短轴缩短率(LVFS)显著提升 ,梗死区纤维化减少,新生血管密度最高(n=5,p<0.01)。同步调控梗死区氧化应激与电传导微环境,为心肌梗死修复提供新型微创治疗策略。心肌梗死(MI)因冠状动脉阻塞引发,死亡率高。发病初期,缺血缺氧微环境导致心肌细胞不可逆坏死,触发炎症反应,进而扩散至非梗死区,引发心肌细胞进一步丢失、心室壁完整性破坏甚至心脏破裂,核心诱因是过度氧化应激与炎症。传统水凝胶虽能通过调控病灶微环境促 MI 修复,但多缺乏抗氧化与电传导协同功能;α- 生育酚(α-TOH)作为强效抗氧化剂,可减少氧化应激致细胞凋亡,且临床发现 MI 患者 48 小时内血浆维生素 E 水平下降,高血清 α-TOH 与心血管死亡率降低相关;PEDOT:PSS 则因水溶性好、导电性优且生物相容,是理想导电成分。本研究旨在整合 α-TOH 的抗氧化性与 PEDOT:PSS 的导电性,构建可注射 FPDA 水凝胶,同步改善梗死区氧化应激与电传导障碍,提升 MI 治疗效果。采用两步法合成 FPDA 水凝胶(图 1):第一步利用 F127DA 的自组装特性(PPO 段疏水缠结形成 10-20nm 胶束),通过涡旋和超声将 α-TOH(终浓度 1、10mg/mL)封装于胶束疏水核心;第二步加入 PEDOT:PSS 与多巴胺(DA),DA 在碱性环境下氧化聚合为 PDA,再经 405nm 蓝光(10mW/cm²)光聚合交联成胶。图 1 展示 F127DA-PEDOT:PSS-PDA-α- 生育酚(FPDA)水凝胶的制备过程及其在体内心脏修复中的治疗机制示意图。- 材料稳定性:α-TOH 加载后溶液呈乳浊状(图 2c),透射电镜(TEM)显示 α-TOH 在溶液中分散均匀(图 2d),无油水相分离;
- 温敏特性:所有组水凝胶物理凝胶温度为 30-35℃,注入 37℃水中可快速固化(图 2f),满足体内注射需求;
- 微观结构:冻干水凝胶横截面扫描电镜(SEM)显示,添加 PEDOT:PSS/PDA 后表面粗糙度增加,FPD 与 FPDA 组可见更多颗粒物(图 S3),但各组溶胀率无显著差异(图 S4)。
图 2 水凝胶的合成过程与结构表征。(a、b)采用简单两步法制备 FPDA 水凝胶;(c)加载 α-TOH 的 F127DA 溶液照片(以水为对照);(d)加载 10mg/mL α-TOH 的 10%(w/v)F127DA 水凝胶溶液的 TEM 图像;(e)F127DA-α-TOH+PEDOT:PSS+DA-HCl-NaOH+LAP 溶液混合形成水凝胶的示意图;(f)水凝胶溶液的温敏凝胶特性展示;(g)各组水凝胶的物理凝胶温度统计。FPDA 水凝胶兼具优异力学性能与导电性(图 3):- 拉伸性能:可拉伸至 140% 以上(图 3a),应力 - 应变曲线显示 PDA 可提升水凝胶拉伸性能;经 50 次 100% 拉伸循环后,强度损失小且无显著塑性变形(图 3c);
- 压缩性能:60% 压缩应变下可快速恢复原状,50 次压缩循环后稳定性良好(图 3d、e);
- 导电性:随 PEDOT:PSS 浓度(0.1-0.3wt%)升高,导电性显著提升(图 3f),变形状态下仍保持良好导电(视频 S2);
- 黏附性能:PDA 的儿茶酚基团可与组织蛋白结合,FPDA 水凝胶黏附强度较无 PDA 组提升约 5 倍(图 3k),可紧密黏附于兔心外膜,经水冲洗后仍稳定(图 3m);
- 流变特性:所有组水凝胶储能模量(G')均大于损耗模量(G''),形成稳定胶体体系,添加 DA 后 G' 降低(图 3i),与杨氏模量下降趋势一致(图 3g)。
图 3 水凝胶的力学性能。(a)FPDA 水凝胶优异拉伸性的照片;(b)不同水凝胶的拉伸应力 - 应变曲线;(c)FPDA 水凝胶的循环拉伸测试;(d)FPDA 水凝胶的压缩恢复性能;(e)FPDA 水凝胶的循环压缩测试;(f)不同水凝胶的导电性;(g)不同水凝胶的原子力显微镜(AFM)杨氏模量测试;(h)水凝胶的蠕变恢复测试;(i)角频率 1-100rad/s 下的振幅扫描结果;(j)黏附强度测试装置;(k)水凝胶的黏附强度;(l)水凝胶黏附兔心外膜在动态传导下的稳定性;(m)水冲洗下水凝胶黏附兔心脏的情况(n=3,p<0.05,p<0.01,p<0.001,Student's t 检验)。- 生物相容性:H9C2 心肌细胞与 HUVEC 血管内皮细胞在各水凝胶上培养,活 / 死染色显示细胞存活率均 > 90%(图 4a、e),培养 5 天细胞增殖明显(图 4b),无显著细胞毒性;
- 抗氧化性能:用 DCFH-DA 染色检测活性氧(ROS),H₂O₂诱导下,对照组呈强绿色荧光(ROS 含量高),FPD 组(含 PDA)ROS 显著降低,FPDA10 组(10mg/mL α-TOH)几乎无绿色荧光(图 4c),定量显示其 ROS 清除能力最优(图 4d,p<0.001);
- 药物缓释:以姜黄素为模型分子,FPDA 水凝胶可在 PBS 中持续释放疏水药物,为长期抗氧化提供保障(图 S8)。
图 4 水凝胶的体外生物相容性。(a)H9C2 细胞与 HUVEC 细胞在水凝胶上培养 1 天、3 天的活 / 死染色(绿色:活细胞;红色:死细胞);(b)不同水凝胶支架对 H9C2 细胞增殖的影响;(c)H9C2 细胞在不同水凝胶上生长的细胞内总 ROS(DCFH-DA,绿色)荧光图像;(d)不同水凝胶上细胞内总 ROS 的相对荧光定量;(e)HUVEC 细胞在水凝胶上培养 24 小时、72 小时的活 / 死染色;(f)H9C2 细胞与 HUVEC 细胞的存活率定量(FPDA1、FPDA10 分别指水凝胶中 α-TOH 浓度为 1、10mg/mL)。新生大鼠心肌细胞(CMs)在 FPDA 水凝胶上培养 7 天,表现出更优的成熟度与功能协同性(图 5):- 细胞形态:免疫荧光显示,FPDA 组 α- 肌动蛋白(α-actinin,绿色)阳性肌节密度更高(图 5a、b), connexin 43(Cx43,红色,间隙连接蛋白)表达量显著高于对照组(图 5c,p<0.01),提示心肌细胞功能更成熟;
- 钙瞬变:Fluo-4 AM 染色显示,FP、FPD、FPDA 组心肌细胞出现节律性同步钙荧光峰,而无导电成分的 FH 组钙峰紊乱;FPDA 组钙峰数量更多、达峰时间更短(图 5d-f,p<0.01),表明电传导与收缩协同性更强。
图 5 水凝胶对体外心肌细胞的影响。(a)培养 7 天的心肌细胞中 α- 肌动蛋白(绿色)与 Cx43(红色)的表达水平;(b、c)α- 肌动蛋白与 Cx43 表达的表面积覆盖率定量;(d)培养 7 天的心肌细胞钙瞬变及 Ca²⁺信号频率;(e)每 3 秒不同水凝胶中心肌细胞的 Ca²⁺瞬变传播峰数;(f)Ca²⁺瞬变传播达峰时间。在兔急性 MI 模型(结扎左前降支,ECG 显示 ST 段抬高,图 6a)中,将 FPDA 水凝胶注射于梗死区表面并光交联,术后 4 周评估修复效果:- 组织形态:Masson 三色染色显示,MI 组梗死区大量蓝色胶原沉积(严重纤维化),FPD 与 FPDA 组梗死面积显著缩小,FPDA 组梗死区周围可见丰富新生心肌(图 6b);
- 心功能:超声心动图显示,FPDA 组左心室前壁收缩明显改善,LVEF 与 LVFS 较 MI 组显著提升(图 6d、e,n=5,p<0.01),左心室舒张末期内径(LVIDd)与收缩末期内径(LVIDs)显著降低(图 6f、g),有效抑制左心室重构;
- 血管新生:CD31(内皮细胞 marker)与 α-SMA(血管平滑肌细胞 marker)双染色显示,FPDA 组梗死区新生血管密度最高(图 8a-c,p<0.001),为缺血心肌提供充足营养;
- 氧化应激:DHE 染色显示,FPDA 组梗死区 ROS 荧光信号显著低于 MI 组(图 S13),证实其抗氧化作用。
图 6 注射水凝胶 4 周后对梗死心肌的修复效果。(a)兔心脏结扎与水凝胶植入过程的宏观图像及结扎前后典型心电图;(b)兔心脏切片的 Masson 染色;(c)假手术(Sham)、MI、MI+FPD、MI+FPDA 组术后 4 周的超声心动图(红色线:LVDd,绿色线:LVDs);(d-g)超声心动图评估的左心室功能参数:(d)LVEF、(e)LVFS、(f)LVIDd、(g)LVIDs。图 7 兔心肌梗死修复效果评估。(a)心脏切片中 α- 肌动蛋白(绿色)、Cx43(红色)与细胞核(蓝色)的免疫染色;(b、c)心脏切片中 Cx43 与 α- 肌动蛋白的面积分数覆盖率定量(Sham 与 MI 组 n=3,FPD 与 FPDA 组 n=5)。图 8 4 周后心肌血管新生评估。(a)心肌梗死治疗 28 天后,梗死心肌区域 CD31 与 α-SMA 的免疫组化图像;(b、c)梗死区域新生血管数量定量(n=4)。本研究成功构建兼具可注射性、抗氧化性与导电性的 FPDA 水凝胶:体外实验证实,PDA 与 α-TOH 协同清除 ROS、抑制细胞凋亡,且水凝胶可促进心肌细胞成熟与同步收缩;兔 MI 模型中,FPDA 水凝胶通过调控梗死微环境,显著提升心功能、缩小梗死面积、促进血管新生。该水凝胶制备简便、生物相容性好,且 α-TOH 成本低、易临床转化,为心肌梗死微创治疗提供新方案。未来可进一步优化材料降解速率与药物释放动力学,在大型动物(如猪)模型中验证长期疗效,推动临床转化。- Chang Cui* 崔畅:南京医科大学第一附属医院心内科,中国南京 210000;
- Haiyang Li* 李海洋:北京安贞医院心脏外科,中国北京 100029;
ACS Nano(2024 年,卷 18,页码 10216-10229);https://doi.org/10.1021/acsnano.4c00509